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植物根系生长监测系统CI-600
    发布时间: 2019-04-18 14:33    

监测土壤中活体根系的生长动态

Ø  监测根系的详细结构(甚至土壤颗粒)

Ø  可以速去不同深度的根系分布或土壤剖面图像

Ø  定点、连续观测根系在整个生长季中的动态变化

Ø  不同光学分辨率进行对应标定

Ø  扫描软件可以设置不同图像格式(BMPJPGTIFPNG

Ø  对光源进行设置,满足不同环境下的扫描

Ø  分析软可以快速的进行分析根系的相关参数(根长、周长、表面积、体积、根尖数、直径等36个常用参数


植物根系生长监测系统CI-600

植物根系生长监测系统CI-600

主要功能

Ø  监测土壤中活体根系的生长动态

Ø  监测根系的详细结构(甚至土壤颗粒)

Ø  可以速去不同深度的根系分布或土壤剖面图像

Ø  定点、连续观测根系在整个生长季中的动态变化

Ø  不同光学分辨率进行对应标定

Ø  扫描软件可以设置不同图像格式(BMPJPGTIFPNG

Ø  对光源进行设置,满足不同环境下的扫描

Ø  分析软可以快速的进行分析根系的相关参数(根长、周长、表面积、体积、根尖数、直径等36个常用参数)

测量参数

Ø  操作简单、便携、方便测量

Ø  获取定位的不同时间季节、不同深度的根系分布或土壤剖面图像数据

Ø  应用专业根系分析软件分析根系长度、直径、截面积、投影面积、根尖数等参数

应用领域

根系监测系统CI-600广泛应用在田间农作物根系研究、林木根系长期监测,水利工程(例如大坝)护坡草坪选种培育、古树病虫害的监测、草原的植被恢复与保护研究。

主要技术参数

Ø  工作环境:050,相对湿度0100%RH(没有水汽凝结)

Ø  *主机特点:柱型设计的360度旋转光电耦合主机,可对根系和土壤状态进行不变形的线性数据获取

Ø  可获得高分变率的图像(2.35千万像素)

Ø  无损线性扫描

Ø  光学分辨率可选1003006001200Dpi

Ø  电源:UMPC终端供电和软件控制

Ø  数据存贮:直接存贮到数据处理终端

Ø  *一次获取数据尺寸:21.56cm×19.56cm

Ø  主机获取速率:30-480秒(100600Dpi

Ø  *主机探头尺寸:34.3cm长×6.4cm直径

Ø  透明观察管:6.4cm内径100200cm

Ø  *主机:750g

根管

Ø  内径:6.36cm

Ø  外径:7.0cm

Ø  壁厚:3.2mm

Ø  长度:1m2m

选购指南

主机、专业根系软件、校准管、探杆、使用说明书、便携式仪器箱

 

配置选项一

根系分析软件系统 

CI-690ROOTSNAP根系分析软件系统

CI-690 RootSnap专业根系分析软件安装在触摸屏的图像数据处理终端上,可以非常方便的使用手指在根图上划过选择根系(新型方式)或使用鼠标点击选择根(传统方式)RootSnap将自动拟合根生长的轨迹,包括调整根系轨迹弧度,根系角度研究,手指控制放大缩小图像等。自动测量根的长度、直径、表面积、体积等参数,还可以一键估算图像中的总生物量。

功能

Ø  多点控制界面,优化触屏功能

Ø  根长、面积、体积、直径和分枝角的测量

Ø  平均根参数

Ø  6秒内快速获得根的轨迹

Ø  改善图像品质

Ø  自动“Snap to Root”功能

Ø  综合分析关键包

Ø  时间序列根图分析

Ø  友好的用户界面

 

                      

配置选项二

 

WinRHIZO Tron MF根系分析软件

利用WinRHIZO Tron MF可以对CI-600获取的根系图像进行分析,可得到根系根长、表面积、投影面积、体积、平均根直径和根尖数目等参数,监测根系时空生长变化。

产地:美国CID

参考文献

原始数据来源:Google Scholar

 

1.       Seung Hyun Han, Soonjin Yun, Jongyeol Lee, Seongjun Kim, Hanna Chang, Yowhan Son2016Estimating the production and mortality of fine roots using minirhizotrons in a Pinus densiflora forest in Gwangneung, KoreaJournal of Forestry Research 10.1007/s11676-016-0221-6

2.       Romero, P., Perez-Perez, J., del Amor, F., Martinez-Cutillas, A., Dodd, I., Botia, P.2016Partial root zone drying exerts different physiological responses on field-grown grapevine (Vitis vinifera cv. Monastrell) in comparison to regulated deficit irrigationFunctional Plant Biology 10.1071/FP13276

3.       Romero, P., Fernandez-Fernandez, J., Gil-Munoz, R., Botia, P.2016Vigour-yield-quality relationships in long-term deficit irrigated winegrapes grown under semiarid conditionsTheoretical and Experimental Plant Physiology 10.1007/s40626-016-0061-y

4.       Rodriguez, M., Brisson, J.2016Does the combination of two plant species improve removal efficiency in treatment wetlandsEcological Engineering 10.1016/j.ecoleng.2016.02.047

5.       Kobiela, B., Biondini, M., Sedivic, K.2016Comparing root and shoot responses to nutrient additions and mowing in a restored semi-arid grasslandPlant Ecology 10.1007/s11258-016-0571-3

6.       Silva, A., Pereira, N., Malheiros, S., Silva, J., de Medeiros, J., Chaves, S.2016EVALUATION OF ROOT CHARACTERISTICS IN IRRIGATED WATERMELON UNDER PHOSPHATE FERTILIZATION BY MINIRHIZOTRONSIII Inovagri International Meeting 10.12702/iii.inovagri.2015-a045

7.       Lanna, A., Mitsuzono, S., Terra, T., Vianello, R., Carvahlo, M.2016Physiological characterization of common bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes, waterstress induced with contrasting response towards droughtAustralian Journal of Crop Science

8.       Germon, A., Cardinael, R., Prieto, I., Mao, Z., Kim, J., Stokes, A., Dupraz, C., Laclau, J., Jourdan, C.2016Unexpected phenology and lifespan of shallow and deep fine roots of walnut trees grown in a silvoarable Mediterranean agroforestry systemPlant and Soil. 10.1007/s11104-015-2753-5

 

 

 

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